
Rev. Fac. Agron. (LUZ) 1995, 12: 467~83
Determinación por HPLC de los azúcares
en los frutos de guayaba (Psidium guajava L.) de una plantación
comercial del Municipio Mara
HPLC determination of sugars in guava (Psidium guajava L.) fruits of a commercial plantation from Mara municipality
Lilia Arenas de Moreno2 Merylín Marín3 Carmen Castro de Rincón4 Luis Sandoval5
Recibido el 220394 . Aceptado el 280395
1. Proyecto No. S12379 financiado por el CONDES y el
CONICIT.
2. Instituto de Investigaciones Agronómicas.
Facultad de Agronomía. Apartado 15205, MaracaiboVenezuela
3. Departamento de Botánica.
4. Departamento de Estadística.
5. División de Estudios para Graduados. Facultad de Agronomía.
Resumen
Se estudió la variación del contenido de
ribosa, xilosa, fructosa, glucosa, sacarosa y azúcares
totales en frutos de guayaba provenientes de la Granja "Santa
Ana", una plantación comercial ubicada en el Municipio
Mara del Estado Zulia, Venezuela, cosechados en el trimestre JunioAgosto
(MES) de 1991, en diferentes estados de madurez (EM): Pintón,
(P) Maduro (M) y Muy Maduros (MM). La determinación cualitativa
y cuantitativa de los azúcares se realizó por cromatografia
líquida de alta resolución utilizando una columna
Alltech Carbohydrate 10 con acetonitriloagua (75:25) como
fase móvil. El análisis estadístico se realizó
utilizando un diseño completamente aleatorizado, con un
arreglo factorial 3x3. Se realizó un análisis de
varianza mediante el procedimiento General Linear Model del Statistical
Analysis System ( SAS). Las comparaciones de medias entre tratamientos
fueron realizadas por el Método de Tukey para los efectos
principales, usando el método de los Mínimos Cuadrados
para las interacciones significativas. Para la variable Xilosa,
se encontró que no fue afectada por ninguno de los factores
estudiados. Los resultados mostraron que las variaciones en el
contenido de los diferentes azúcares dependen de MES pero
no así el tipo de azúcar. La concentración
de los diferentes azúcares también depende de EM.
Se determinó que la fructosa es el carbohidrato más
abundante en P. mientras que la sacarosa lo es en MM. La concentración
de sacarosa aumenta con EM. La interacción MESXEM afectó
todas las variables estudiadas excepto al contenido de xilosa.
La ribosa varió de 0,0151 a 0,3300~o; la Xilosa de 0,0019
a 0,2146%; la fructosa de 1,7500 a 3,5370%; la glucosa de 1,3033
a 3,0449%; la sacarosa de 0,8181 a 4,2193% y azúcares totales
de 4,1110 a 10,0097% en base fresca.
Palabras craves: Psidium guajava, frutas, azúcares,
HPLC.
Abstract
Variation of ribose, xylose, fructose, glucose, sucrose
and total sugars was studied on guava fruits from "Santa
Ana" Farm, a commercial plantation in Mara Municipality of
Zulia State, Venezuela. Fruit of different maturity stage (MS),
green ripe (GR), ripe (R) and fullripe (FR), were collected
from June to August, 1991. Sugars were analyzed by high performance
liquid chromatography on a Alltech carbohydrate 10 ~ column with
aceonitrilewater (75:25) as mobile phase. The experiment
involved a (3x3) factorial arrangement in a Completely Randomized
Design. Data were analyzed by using the General Linear Model (GLM)
procedure of the Statistical Analysis System (SAS). Specific differences
for principal effects were determined by Tukey's Studentized Range
(HDS), and mean differences between treatment's combinations were
determined by the Least Square Means method. All comparisons were
done at (P<.05) except for sucrose (P<0.10). Xylose was
no affected by any treatment. The results showed that variation
between sugar contents depends on months (MO) in which the fruits
were harvested, although the kind of sugar didn't. Sugar concentrations
also depended on MS. It was determined that fructose was the most
important sugar in green ripe fruits while sucrose was the mayor
carbobydrate in fullripe fruits. Sucrose concentration increased
as MS did it. The MOXMS interaction affected all studied variables
except xylose content. Ribose varied from 0.0151 to 0.3300%; xylose
from 0.0019 to 0.2146%; fructose from 1.7500 to 3.5370%; glucose
from 1.3033 to 3,0449%; sucrose from 0.8181 to 4.2193% and total
sugars from 4.1110 to 10.0097 of fresh weight.
Key words: Psidium guajava, guava, fruits. sugar. HPLC.
Introducción
La determinación individual de los azúcares más
importantes en la guayaba, tales como glucosa, fructosa, sacarosa,
sedoheptulosa, arabinosa, etc., se ha convertido en un estudio
esencial, en la medida en que más investigaciones están
siendo conducidas en las áreas de genética y en
los mecanismos bioquímicos de la formación y degradación
de los carbohidratos de este fruto. A esto se debe agregar el
interés existente en el establecimiento o fijación
de índices de maduración (23), así como la
predicción del potencial de almacenamiento de los frutos
basado en el contenido de azúcares bajo condiciones variadas
(5,7,9,14,29,34,37).
Por otro lado, se debe considerar el hecho de que el análisis
y la caracterización de los carbohidratos en los alimentos,
tanto frescos como procesados, ha sido siempre un aspecto importante
para los tecnólogos de alimentos, químicos, nutricionistas
y la industria agroalimentaria, los que buscan alternativas
en cuanto a edulcorantes se refiere, para cubrir las demandas
del mercado (10). Con el interés creciente de la nutrición,
y consecuentemente, con el nivel nutricional, un control de calidad
confiable se necesita para una amplia variedad de alimentos y
aditivos alimentarios, particularmente en lo que se refiere al
contenido de azúcares (16,39). Una posible relación
entre el consumo de azúcares y algunos desordenes fisiológicos
tales como caries dental, diabetes, obesidad, enfermedades coronarias,
etc., ha sido establecida (25, 28).
La mayoría de las determinaciones tanto cualitativas como
cuantitativas de los carbohidratos hen sido limitados a determinaciones
de azúcares reductores totales y/o no reductores, cuyo
método analítico está basado en la reducción
de una solución alcalina de cobre por los azúcares
reductores (15,22). Sin embargo, la utilización de la técnica
HPLC (cromatografia líquida de alta resolución),
ha permitido una rápida caracterización y cuantificación
de muchos carbohidratos significativos tanto desde el punto de
vista agronómico como nutricional (ó,9,10, 13,18,19,20,21,30,31,32).
Basados en lo anteriormente expuesto, el presente trabajo tiene
como finalidad:
Caracterizar y cuantificar los carbohidratos presentes
en frutos de guayaba de diferentes estados de madurez, y obtenidosen
épocas de cosecha distintas por HPLC.
Determinar las relaciones existentes entre la cantidad
y tipos de azúcares, el estado de madurez de los frutos
y la época de cosecha en que fueron colectados los mismos.
Materiales y métodos
1. Muestras de frutas
Las frutas fueron obtenidas de una de las plantaciones de guayaba
más antiguas de la zona de Mara, ubicada en el sector Monte
Verde y denominada Granja "Santa Ana", (MV), de donde
se seleccionaron 10 plantas al azar de las 20 sometidas a estudio
en el Proyecto denominado "Estudio preliminar sobre las características
químicas de frutos de guayaba (Psidium guajava L.) en
una plantación comercial del Municipio Mara del Estado
Zulia (1). El criterio de selección de las plantas se basó
en su productividad y la calidad fisicoquímica de los frutos.
Los muestreos se realizaron quincenalmente en el período
comprendido entre Junio y Agosto de 1991. Las frutas colectadas
de todos los lados de las plantas, en tres estados de madurez,
Pintón (P), Maduro (M) y Muy Maduro (MM), fueron analizadas
sobre la base de 50 frutas de pulpa roja seleccionadas al azar
por cada estado de madurez. El estado de madurez se estableció
tomando en cuenta el color de la corteza y su textura, la cual
fue determinada utilizando un texturómetro, estableciéndose
una escala de textura para cada estado de madurez:
Pintón (P): 0.561.05 kg/cm2 /cm2
Maduro (M): 0.14 0.49 kg/cm2
Muy Maduro (MM): < 0.11 kg/cm2
El análisis de los carbohidratos se realizó por
triplicado para cada estado de madurez, utilizando muestras compuestas
de 45 frutos (+ 500 g) cada una, y homogeneizadas en un
procesador de alimento. La pasta así obtenida se conservó
en bolsas plásticas de cierre hermético a 15°C
hasta su utilización.
2. Método de extracción
Duplicados de 1020 gramos de pasta de guayaba fueron reflujados
en 75 ml de una mezcla de metanol de alta pureza y agua en la
proporción 80:20, a una temperatura de 80°C por una
hora. Después de dejarlo enfriar, el extracto alcohólico
fue filtrado al vacío a través de paper de filtro
Whatman No. 1, y el material residual fue lavado con dos porciones
de 15 ml de la mezcla alcoholagua caliente (10,37).
El extracto alcohólico fue filtrado nuevamente utilizando
un filtro de membrana de 0,45 ~m, y concentrado a una temperatura
entre 40 y 60°C en un rotaevaporador Büchi. Una vez
removido totalmente el alcohol, el extracto acuoso (710
ml), fue diluido en agua bidestilada a un volumen final de 50
ml.
Los extractos acuosos fueron nuevamente filtrados a través
de un filtro de membrana de 0.2 ~m, y purificados con cartuchos
SepPak C18 (Waters Assoc., Inc. Milford, Massachusetts).
Los dos primeros mililitros del filtrado fueron descartados y
los siguientes fueron colectados para el análisis HPLC
(25).
3. Análisis HPLC
Los extractos acuosos fueron analizados por HPLC, en un cromatógrafo
de líquidos Shimadzu Corporation, Modelo LClOAD,
equipado con: a) unidad degasificadora Modelo DGU2A; b)
distribuidor de solvente Modelo FCV 10AL; c) refractómetro
diferencial Modelo RID 6A; d) horno para columna Modelo
CIY) 10A; e) inyector tipo válvula de Reodine con
un loop de 20111; y f) un integrador computarizado modelo CR7A.
Una columna de acero inoxidable de 300mm x 4,1 mm D.I, (Alltech
Carbohydrate 10 Il), conectada en serie a una precolumna (Alltech
AdsorbosphereNH2 5), fue utilizada para el análisis
tanto cualitativo como cuantitativo (32).
La separación isocrática de los azúcares
se realizó a una temperatura de 30°C, usando una fase
móvil compuesta por 75% de acetonitrilo grado HPLC (Mallinckrodt)
y 25% de agua bidestilada, previamente filtrada a través
de un filtro de membrana de 0,45 gm y degasificada. (ó,18,20,30)
Se empleó una velocidad de flujo de 0,8 ml/mint
La caracterización y cuantificación de los carbohidratos
presentes en las muestras fue posible por la comparación
de los tiempos de retención y las áreas de los picos
de las muestras y los tiempos de retención y las áreas
de los picos de soluciones de 10 mg/ml de patrones de ribosa,
xilosa, fructose, glucose, sacarosa y lactose obtenidos de Sigma
Chemical Company (St. Louis, Mo.). La reproducibilidad del método
analítico se aseguró analizando cada muestra por
triplicado. Los resultados se expresaron como porcentaje de peso
fresco.
4. Análisis estadístico de los resultados
El experimento involucró un arreglo factorial de los tratamientos
[tres estados de madurez (EM) x tres diferentes meses de cosecha
(M)] con un diseño totalmente aleatorizado. Se realizaron
análisis de varianza (ANADEVA) usando el procedimiento
General Linear Model (GLM) del Statistical Analysis System (SAS.)
Las comparaciones de medias entre tratamientos fueron determinadas
por el Método de Tukey para los efectos principales, usando
el método de los Mínimos Cuadrados para las interacciones
significativas. Se usaron las transformaciones RAIZ CUBICA para
las variables Ribosa y Xilosa, y ARCSEN de la raíz cuadrada
para las variables Fructosa, Glucosa, Sacarosa y Azúcares
totales.
Resultados y discusión
En esta investigación se identificaron seis tipos de azúcares:
Ribosa, Xilosa, Fructosa, Glucosa, Sacarosa y Lactosa, ésta
última sólo presente en trazas. Las figuras 1, 2
y 3 corresponden a los cromatogramas característicos de
muestras de frutos de guayaba en los diferentes estados de madurez
estudiados.
En los Cuadros 1 y 2 se muestran las variaciones de los contenidos
de azúcares en las muestras de guayaba sometidas a estudio,
por estado de madurez y por época de cosecha respectivamente.
A continuación se presenta la interpretación de
los resultados obtenidos para cada variable en las muestras analizadas.
Ribosa
El contenido de ribosa varió de 0,0151 a 0,3300%. Los resultados
demuestran que la mayor concentración promedio de este
carbohidrato la presentaron los frutos cosechados en los meses
de Junio y Agosto, no detectándose diferencias entre estos
dos meses. Sin embargo, el análisis de varianza detectó
que existen diferencias significativas (P<.05) al comparar
las concentraciones de ribosa en los frutos cosechados en Julio,
en donde se obtuvo la menor concentración. También
se observó que no existen diferencias en el contenido de
ribosa en los diferentes estados de madurez. La interacción
(MXEM) muestra una diferencia significativa (P<.05), lo que
indica que el contenido de ribosa varía entre los estados
de madurez dependiendo del mes en que son cosechados los frutos
(Figura 4). En todas las muestras analizadas se detectó
la presencia de ribosa, la cual no ha si do previamente reportada
como un constituyente de la guayaba. Los trabajos realizados por
Chan y Kwok (11) y por Wilson et al (37) demostraron que
fructosa, glucosa y sacarosa son los únicos azúcares
presentes en frutos de guayaba. Sin embargo otras pentosas tales
como arabinosa y xilosa han sido identificadas (28). La presencia
de ribosa en las muestras analizadas, podría ser una consecuencia
de la condición genética y/o ambiental que determine
la variabilidad en las características químicas
de los frutos de guayaba (17,33).
Fig. 1 Cromatograma característico de muestras de frutos
de guayaba muy pintones
Fig. 3 Cromatograma característico de muestras de frutos
de guayaba maduros
Fig. 3 Cromatograma característico de muestras de frutos
de guayaba muy maduros
Fig. 4. Variación de la concentración de Ribosa
en los frutos de guayaba
Cuadro 1. Rangos de variación de la concentración
de azúcares en frutos de guayaba (Psidium guajava L.)
provenientes de la Granja Monte Verde, colectados en tres estados
de madurez
| Azúcar* |
Mínimo |
Máximo |
X |
S |
| Estado de maduración: Pintón |
| Ribosa |
0.0220 |
0.3188 |
0.2069 |
0.0875 |
| Xilosa |
0.0197 |
0.1905 |
0.0707 |
0.0372 |
| Fructosa |
1.8652 |
3.5370 |
2.7174 |
0.4021 |
| Glucosa |
1.3983 |
3.0449 |
2.2278 |
0.4124 |
| Sacarosa |
0.8181 |
2.8312 |
1.5887 |
0.4676 |
| A.T. |
4.1110 |
8.6920 |
6.6703 |
1.2133 |
| Estado demaduración: Maduro |
| Ribosa |
0.0369 |
0.3300 |
0.1522 |
0.0871 |
| Xilosa |
0.0019 |
0.2146 |
0.0489 |
0.0531 |
| Fructosa |
1.7500 |
3.2633 |
2.4833 |
0.4662 |
| Glucosa |
1.3033 |
2.9355 |
1.9941 |
0.4649 |
| Sacarosa |
0.9537 |
3.3413 |
2.1716 |
0.6197 |
| A.T. |
4.1714 |
9.4859 |
6.7997 |
1.2992 |
| Estado de maduración: Muy Maduro |
| Ribosa |
0.0151 |
0.2807 |
0.1567 |
0.0719 |
| Xilosa |
0.0021 |
0.0962 |
0.0577 |
0.0258 |
| Fructosa |
2.1085 |
3.3087 |
2.7110 |
0.3977 |
| Glucosa |
1.5487 |
3.0258 |
2.1429 |
0.3837 |
| Sacarosa |
2.0808 |
4.2193 |
3.0371 |
0.5610 |
| A.T. |
6.4532 |
10.0097 |
8.1089 |
1.0206 |
A.T.: Azúcares Totales
* azúcares expresados en g/100 g de muestra
NOTA: Información basada en 18 observaciones
Cuadro 2. Rangos de variación de la concentración
de azúcares en frutos de guayaba (Psidium gunjava L.) provenientes
de la granja Monte Verde, colectados en tres épocas
| Azúcar* |
Mínimo |
Máximo |
X |
S |
| Mes. Junio |
| Ríbosa |
0.0220 |
0.3300 |
0.1850 |
0.0785 |
| Xilosa |
0.0165 |
0.2146 |
0.0663 |
0.0533 |
| Fructosa |
2.0780 |
3.5370 |
3.0031 |
0.3211 |
| Glucosa |
1.7172 |
3.0449 |
2.4752 |
0.3459 |
| Sacarosa |
1.0949 |
4.2193 |
2.4517 |
0.9318 |
| A.T. |
5.9575 |
10.0097 |
8.1812 |
1.1551 |
| Mes: Julio |
| Ribosa |
0.0151 |
0.3188 |
0.1387 |
0.1170 |
| Xilosa |
0.0019 |
0.0962 |
0.0501 |
0.0356 |
| Fructosa |
1.7500 |
3.3087 |
2.4449 |
0.4293 |
| Glucosa |
1.3033 |
3.0258 |
1.9619 |
0.4205 |
| Sacarosa |
0.8181 |
2.9488 |
1.9333 |
0.6722 |
| A.T. |
4.1110 |
8.9003 |
6.3741 |
1.4025 |
| Mes: Agosto |
| Ribosa |
0.0997 |
0.2491 |
0.1870 |
0.0416 |
| Xilosa |
0.0370 |
0.0945 |
0.0600 |
0.0161 |
| Fructosa |
2.1085 |
3.1003 |
2.4635 |
0.2729 |
| Glucosa |
1.5487 |
2.4148 |
1.9277 |
0.2597 |
| Sacarosa |
1.1782 |
3.9386 |
2.4124 |
0.7386 |
| A.T. |
5.8766 |
8.4284 |
7.0235 |
0.6836 |
A.T.: Azúcares Totales
* azúcares expresados en g/100 g de muestra
NOTA: Información basada en 18 observaciones
Xilosa
La concentración de xilosa varió de 0,0019 a 0,2146~o,
observándose su menor promedio en los frutos maduros y
los cosechados en el mes de Julio, y el mayor en los frutos pintones
y los cosechados en Junio y Agosto. E1 ANADEVA no detectó
diferencias significativas para ninguno de los factores estudiados.
La presencia de este carbohidrato como constituyente de la guayaba
ha sido reportado por Nahar et al (28), quienes consideran
que se debe a la existencia de polímeros no glucánicos
en este fruto. Otros autores (35), consideran que la presencia
de hongos pue d en pro du cir desdoblamiento de las pectinas,
y trazas de xilosa o ácido galacturónico seen algunas
veces detectados. La Figura 5 muestra las variaciones en la concentración
de este carbohidrato dependiendo del estado de madurez y la época
en que fueron cosechados.
Fructosa
Para esta variable, el ANADEVA detectó diferencias altamente
significativas (P<.01) entre los diferentes meses de cosecha.
En la Figura 6, puede observarse que el contenido de este carbohidrato
es mayor en los frutos cosechados en el mes de Junio, disminuyendo
drásticamente en los meses Julio y Agosto, no observándose
diferencias entre estos dos últimos meses.
E1 análisis respecto al estado de madurez muestra que la
menor concentración se obtiene en frutos maduros, diferenciándose
significativamente (P<.05) del contenido de este carbohidrato
en frutos pintones y muy maduros, y entre los que no existen diferencias.
Estos resultados son diferentes a los reportados por Yusof y Mohamed
(38), quienes reportan un incremento lineal de os niveles de fructose
con la maduración del fruto de la variedad Vietnamita,
y a los reportados por Wilson (36) quien citando a LeRiche, indica
que la fructose es el azúcar más importante y que
sus niveles se incrementan durante la maduración decreciendo
en frutos sobremaduros.
E1 presente análisis también reveló diferencias
significativas (P<.01) para la interacción (MXEM), indicando
una clara dependencia entre estos dos factores. La Figura 6 muestra
que las mayores concentraciones se obtuvieron en el mes de Junio
en los diferentes estados de madurez. En Julio se observaron diferencias
importantes entre el contenido de fructose en los frutos muy maduros
con respecto a los frutos pintones y los maduros, mientras que
en el mes de Agosto la mayor concentración se presentó
en los frutos pintones sobre los maduros y los muy maduros. Las
concentraciones de fructose variaron de 1.7500 a 3.5370%, niveles
similares a los reportados por Chan y Kwok (11).
Fig. 5. Variación de la concentración de Xilosa
en los frutos de guayaba
Fig. 6. Variación de la concentración de Fructosa
en los frutos de guayaba
Glucosa
Con respecto a la glucose se observaron claras diferencias (P<.05)
entre los meses en que fueron cosechados los frutos (Figura 7).
Se determinó que en el mes de Junio su concentración
es mayor que en los meses Julio yAgosto, no observándose
diferencias significativas entre estos dos últimos. A1
analizar la relación entre los estados de madurez, se detectaron
diferencias (P<.05) al observar las mayores concentraciones
en los frutos pintones por encima de los frutos maduros, aún
cuando no hay diferen ci as en rel ación a lo s frutos
muy maduros, pudiendo observarse que su concentración tiende
a disminuir en la medida en que avanza el estado de madurez de
los frutos.
La interacción (MXEM) arrojó diferencias significativas
(P<.05), observándose que las mayores concentraciones
se obtuvieron en Junio, donde el contenido es similar para los
tres estados de madurez, siendo ligeramente superior en los frutos
pintones. En Julio (P<.01), la mayor concentración se
observó en los frutos muy maduros, no existiendo diferencias
entre los pintones y maduros. En Agosto, los frutos pintones mostraron
el mayor contenido de glucose, no existiendo diferencias entre
los maduros y muy maduros. Las concentraciones de este carbohidrato
variaron de 1.3033 a 3.0449%, valores similares a los reportados
por Nahar et al (28) y por Chan y Kwok (11), pero más
altos que los encontrados por Wilson et al (37).
Sacarosa
Se observaron diferencias (P<.01) entre los diferentes meses
de colección de los frutos, siendo Junio y Agosto los meses
en donde los frutos presentaron las concentraciones más
altas, en comparación con la del mes de Julio. Se observó
que la sacarosa se presenta en los frutos muy maduros en mayores
concentraciones, siendo los frutos pintones los que contienen
la menor concentración. Estas diferencias son sig~uficativamente
diferentes (P<.01) en todos los estados de madurez sometidos
a estudio. El incremento en la concentración de sacarosa
a medida que progresa la maduración del fruto se cree se
debe al aumento en la actividad enzimática sobre las sustancias
pécticas y la celulosa, que constituyen a su vez reserves
de carbohidratos, y que sirven de fuentes potenciales de ácidos,
azúcares y otras sustancias respiratorias durante el proceso
de maduración (26,27,38). La interacción (MXEM)
determinó que la concentración de sacarosa, en término
generadas se trace menor en frutos cosechados en el mes de Julio,
siendo su valor significativamente diferente (P<.05) de los
valores encontrados en Junio y Agosto, los que son similares (Figura
8). En los tres meses, las concentraciones más altas las
mostraron los frutos muy maduros, seguido de los maduros y los
pintones. Su concentración varió de 0.8181 a 4,2193%,
valores similares a los reportados por Abreu de V. (1,2), Arenas
de M. (4), y Marín, et al (24). Partiendo de los
resultados obtenidos, en donde los niveles de sacarosa aumentan
con el estado de madurez de los frutos, podría considerarse
como una medida cuantitativa del índice de maduración
de los frutos de guayaba.
Fig. 7. Variación de la concentración de Glucosa
en los frutos de guayaba
Fig. 8 Variación de la concentración de Sacarosa
en los frutos de guayaba
Azúcares Totales
A1 analizar el contenido de Azúcares Totales (AT), se pudo
observer que los frutos muy maduros son los que contienen la mayor
concentración, siendo ésta significativamente diferente
(P<.01) de los otros dos estados de madurez considerados, situación
contraria a la que reporta Chyau et al ( 14). También
se observó que la mayor concentración de AT se obtuvo
en los frutos cosechados en el mes de Junio y la menor en los
frutos del mes de Julio, siendo significativas las diferencias
(P<.01) entre los tres meses considerados (Figura 9). La interacción
(MXEM) mostró diferencias significativas (P<.05). Nuevamente
los frutos muy maduros fueron los que presentaron las concentraciones
más altas en los diferentes meses de cosecha, con respecto
a los pintones y maduros, aunque no existen diferencia entre estos
últimos. E1 contenido de azúcares totales varió
de 4.1110 a 10.0097%, rangos similares a los reportados por otros
autores (2,3,8,12,24,36).
Fig. 9. Variación de la concentración de Azúcares
Totales en los frutos de guayaba
1. Las variaciones en el contenido de azúcares en las muestras
de guayaba analizadas dependen del momento en que son cosechados
los frutos durante el pico de producción en la zona de
Mara.
2. Los análisis de varianza demostraron que el contenido
de cada uno de los azúcares identificados varían
significativamente dependiendo del estado de madurez de los frutos.
3. A1 analizar el comportamiento de los frutos en los diferentes
estados de madurez a lo largo del período de cosecha, se
observaron cambios significativos durante el mes de Julio, mes
en el cual la producción de guayaba en la zone de Mara
alcanza su mayor nivel.
4. Se determinó que la fructosa es el azúcar más
abundante en los frutos pintones (P), seguido por la glucosa,
mientras que en los frutos muy maduros (MM), es la sacarosa el
azúcar predominante.
5. Este estudio demostró que la sacarosa aumenta con el
estado de madurez de los frutos, lo que permitiría utilizarla
como posible índice de maduración.
6. Todos los azúcares estudiados fueron detectados en la
totalidad de las muestras analizadas, lo que permite afirmar que
el tipo de carbohidrato no depende de ninguno de los factores
analizados en este estudio.
7. La identificación de ribosa como constituyente en la
guayaba de la zona de Mara supone la influencia de la variabilidad
genética. Sin embargo, se debe profundizar en el análisis
de esta variable para proporcionar resultados concluyentes.
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